Efecto de la modificación física y química de los almidones sobre las propiedades funcionales de un producto cárnico a base de pescado

Resumen

El almidón nativo de chayotextle (Sechium edule) y papa (Solanum tuberosum), fue modificado química (H2SO4 3N durante 7h) y térmicamente (autoclave a 121 °C por 1h), buscando propiedades funcionales para su aplicación a un alimento cárnico de pescado, aumentando el contenido de almidón resistente (AR) en las muestras a valores de hasta 33.43%, los estudios de calorimetría mostraron que las modificaciones incrementaron la temperatura pico de los almidones entre 107.72-107.88 °C y disminuyeron los valores de ΔH a 7.78-8.81, el estudio de análisis rápido de viscosimetría (RVA) mostró que los valores de viscosidad disminuyeron por los tratamientos aplicados. Los almidones nativos y modificados fueron adicionados en la formulación de discos para hamburguesa elaborados con trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss), en una proporción del 5% p/p, en la caracterización del cárnico el contenido de AR fue de hasta 12.7% en el cárnico con almidón de papa con modificación ácida (APMA). Los tratamientos con almidón de chayotextle con modificación ácida (ACHMA) y con almidón de papa con modificación térmica (APMT) presentaron los menores niveles de oxidación lipídica con un máximo de 6.75 y 6.14 mg malonaldehído (MAD)/kg respectivamente.


Palabras clave: Almidón resistente (AR), Chayotextle, Papa, Oxidación lipídica, Cárnico

Introducción.

El almidón es el carbohidrato más abundante y de mayor aporte de energía metabólica en la dieta (Sajilata et. al. 2006), es considerado como un ingrediente funcional, que proporciona características como adhesión, opacidad, formación de gel (Fuentes-Zaragoza et. al. 2010), para direccionar el uso específico de los almidones se recurren a diferentes fuentes botánicas, potenciando su funcionalidad mediante modificaciones estructurales (Cummings & Stephen, 2007), que le otorguen a los gránulos estabilidad en los procesos. La adición del almidón modificado en la carne y otros alimentos se ha investigado debido a que promueve condiciones benéficas específicas para la salud (Evans, 2016) principalmente en la flora microbiana, el índice de glucemia y el nivel de colesterol en la sangre entre otros (Fuentes-Zaragoza et al., 2010).

Materiales y métodos

Materiales.

e aisló almidón nativo de Chayotextle y papa, se sometieron a hidrolisis ácida y tratamiento térmico, contando con 6 tratamientos de almidón para su caracterización. Se utilizó carne de trucha, esta fue fileteada, y molida, la formulación del cárnico, incluyo sal (1%), aceite de maíz (2%), especies (0.4%), almidón  (5%) y carne de trucha (91.6% y 96.6% para el control), evaluando en total 7 tratamientos, las muestras fueron almacenadas a -18°C±1  hasta su uso, las mediciones se realizaron en condiciones almacenamiento a 0°C±1 durante 21 días.

Métodos

Aislamiento del almidón.

De acuerdo a Hernandez-Uribe et. al. (2011),  los tubérculos se cortaron en cubos de 2x2 cm, se licuaron (LI12A International), mezclando con agua (50% w/v) durante dos minutos, el macerado se fue tamizado en mallas de 100, 200 y 325, el líquido se decantando por 12 horas por triplicado, se secó a 40°C durante 24 h, se molió y tamizó.

Modificación del almidón.

El Tratamiento ácido del almidónse realizó de acuerdo a Palma-Rodríguez et al. (2012). Adicionando H2SO4 3N al almidón en una proporción 1:5 p/v, con agitación durante 7 horas a 60°C, se enfrió y neutralizó mediante una solución saturada de Na2Co3, el almidón se recuperó mediante un triple lavado con agua destilada, seguido de un lavado con etanol al 95%. La modificación térmica del almidón. Se realizó como lo describeAparicio-Saguilan et al. (2005) se colocaron 60 gr de almidón y adicionando 210 ml de agua destilada, en autoclave a 121 °C durante 1 h, se refrigeró por 24 h, repitiendo por triplicado, en ambas modificaciones se secó a 40°C durante 24 hora, se molió y tamizo.

Cuantificación de AR en muestras de almidón y cárnico.

Se siguió la metodología de la AOAC (2012) aprobado por la AACC 32-40.01, con un kit enzimático Megazime®, sobre una muestra de 100 mg (en base seca), consistente en la acción de un complejo enzimático con α-amilasa pancreática y amiloglucosidasa (AMG) y leyo a 510 nm.

Calorimetría diferencial de barrido.

De acuerdo  a la metodología de Hernandez-Uribe et al. (2011), se utilizó un DSC Q2000 (TA Instruments, Newcastle, DE), se colocaron muestras de 2 mg en base seca en celdas de aluminio herméticas, hidratando por 12 horas (7 μL), la prueba se corrió con una rampa de calentamiento de 40 a 140°C con incrementos de 10°C por min.

Análisis rápido de viscosimetría (RVA).

Basado en la metodología de Hernandez-Uribe et al. (2011), se colocaron 27 gr totales en la canastilla de RVA PERTEN 4500, 2 gr de muestra en base seca, completando con agua destilada, en una prueba con aumento de temperatura de 50°C (960 rpm) a 90°C y enfriamiento a 50°C (160 rpm)

Oxidación lipídica en carne.

Se realizó la prueba de TBARS, siguiendo la metodología de Zamudio-Flores et al. (2014), se colocaron 1.5 gr de muestra, con 20 ml de agua milipore y 50 μL de butilhidroxitolueno, se homogenizó con un Ultra Turrax IKA T18, se agregó 5 ml de ácido tricloroacético al 25%, se agitó 15 minutos a 4°C, y se centrifugo a 6500 rpm, se tomaron alícuotas de 3.5 ml agregando 1.5 ml de ácido thiobarbitúrico 0.6%, se incubó durante 30 min a 70°C, se leyó a 532 nm, se realizó una curva de calibración con 1,1,3,3 tetramethoxypropano.

Resultados y Discusión.

Almidones. El porcentaje de AR, se describe en la tabla 1, fue mayor en las muestras sometidas a tratamiento bajo hidrolisis ácida, con 33.43% para ACHMA y 30.89% para APMA, la alza de % de AR por modificación se ha reportado en almidón de maíz (Brumovsky & Thompson, 2001). Las características térmicas (Tabla 1), mostraron temperaturas de gelatinización (Tp) más altos (107.72-107.88) y ΔH más bajos (0.84-1.77) en los almidones modificados, debido al aumento de la proporción cristalina, por tratamientos ácidos (Palma-Rodríguez et al., 2012), y a fusión de las regiones cristalinas y amorfas en los tratamientos térmicos (Da Rosa-Zavareze & Guerra-Dias, 2011) tendencias descritas en almidón de papa (Surendra-Babu et. al. 2015) y almidón de trigo (Liu et al., 2015).

Tabla 1.- Contenido de AR, y perfil térmico y de viscosidad de los diferentes tratamientos de almidón.

  ACHN ACHMA ACHMT APN APMA APMT
% AR 3.40±0.98cd 33.43±1.18a 6.01±0.19bc 0.92±0.19d 30.89±1.24a 6.70±1.95b
Tp (°C) 66.55±0.48b 107.81±0.11a 107.88±0.19a 66.72±0.07b 107.78±0.15a 107.72±0.45a
ΔH (W/g) 12.52±1.26a 1.51±0.80b 0.84±0.46b 12.51±0.10a 1.77±0.56b 1.57±1.22b
Vp (cP) 5231.5±63.50a 15.5±2.50d 534±17.00c 3321.5±14.50b 13±1.00d 80±1.00d

Promedio de tres repeticiones ± error estándar. Los superíndices con la misma letra entre muestras indican que no existe diferencia estadísticamente significativa (α=0.05).

 

El perfil de formación de pasta, mostró una baja en los valores de viscosidad pico de entre 13-15.5 centipoise (cP) en los tratamientos sometidos a modificación ácida, los almidones nativos presentaron picos de viscosidad superiores, siendo el ACHN el más alto con 5231.5 cP, seguido del APN con 3321.5 cP (Tabla 1), este comportamiento se ha observado en almidón papa, maíz y arroz (Jiranuntakul et. al. 2011), debido principalmente a la reducción de la longitud de cadena en las moléculas.

Hamburguesa de trucha.

l AR en el producto cárnico, fue el más alto al adicionar APMA con 12.72%, seguido, de ACHMA con 7.59% (Tabla 2),  los demás tratamientos presentaron valores menores, estos niveles de AR superan el 3.91% reportados por Agostinho dos Santos Alves et al. (2016), en  salchichas tipo bologna que contenían en su formulación harina de plátano inmaduro.

Oxidación lipídica.

La concentración de malonaldehído (MDA) fue en aumento en relación al tiempo (Tabla 2), teniendo en el Ctrl y ACHMT los valores más altos al día 21 (8.97 y 8.37 mg/kg), el resto de tratamientos estuvieron por debajo, mostrando diferencias estadísticas en relación al tiempo, los valores más bajos registrados al día 21 los presentaron ACHMA y APMT (6.75 y 6.14 mg/kg), valores menores que en salchichas adicionadas con extractos de rosa como antioxidante, que alcanzaron 15 mg/kg al tiempo 30 (Tieko-Nassu et. al. 2003).

Tabla 2.- Contenido de AR y valores de oxidación lipídica en relación al tiempo del cárnico adicionado con diferentes tratamientos de almidón

  Ctrl ACHN ACHMA ACHMT APN APMA APMT
% AR   0.00±0.00f 1.32±0.17ef 7.59±0.15b 3.28±0.97d 1.70±0.54e 12.72±0.41a 5.25±0.63c
mg/ MAD por kg de carne T1 2.48±0.69c(A) 1.66±0.20c(ABC) 1.18±0.42d(C) 2.43±0.09c(AB) 1.44±0.44d(BC) 1.06±0.12d(C) 1.84±0.09d(ABC)
T7 5.70±0.06b(B) 6.45±0.07b(A) 4.02±0.07c(D) 5.80±0.24b(B) 5.04±0.13c(C) 3.21±0.08c(E) 3.84±0.06c(D)
T14 7.83±0.31a(B) 6.71±0.08ab(C) 5.29±0.27b(D) 8.52±0.43a(A) 6.25±0.08b(C) 6.28±0.13b(C) 4.44±0.06b(E)
T21 8.37±0.16a(AB) 6.86±0.10a(C) 6.75±0.10a(C) 8.97±0.56a(A) 7.89±0.45a(B) 8.76±0.43a(AB) 6.14±0.09a(C)

Promedio de tres repeticiones ± error estándar. Los superíndices con la misma letra entre muestras indican que no existe diferencia estadísticamente significativa (α=0.05). Los superíndices, en minúscula representan diferencias estadísticas significativas (P<0.05) en un mismo tratamiento a diferentes tiempos. Los superíndices en mayúscula representan diferencias estadísticas significativas (P<0.05) a un mismo tiempo entre diferentes tratamientos.

Conclusiones.

Se logró formular un cárnico, con un alto contenido de almidón resistente, al modificar el almidón nativo y agregarlo como aditivo, esto promovió como efecto una baja en la tasa de oxidación lipídica.

Referencias.

Agostinho dos Santos Alves, L. , Lorenzo, J., Alvarenga Goncalves, C., Alves dos Santos, B., Heck, R., Cichoski, J., & Bastianello Campagnol, P. (2016). Production of healthier bologna type sausages using pork skin and green banana flour as fat replacers. Meat Science. doi: 10.1016/j.meatsci.2016.06.001

AOAC. (2012). Official methods of analysis of AOAC International (Hortwitz Ed. 19 ed.). Geithesburg, Maryland, E.U.A.

Aparicio-Saguilán, A., Flores-Huicochea, E., Tovar, J., Gracía-Suárez, F., Gutiérrez-Meraz, F., & Bello-Pérez, L. (2005). Resistant starch-rich powders prepared by autoclaving of native and lintnerized banana starch: Partial characterization. Starch, 57, 405-412. doi: 10.1002/star.200400386

Brumovsky, J., & Thompson, B. (2001). Production of boiling-stable granular resistant starch by partial acid hydrolysis and hydrothermal treatments of high-amylose maize starch. Cereal chemistry, 78, 680-689.

Cummings, J., & Stephen, A. (2007). Carbohydrate terminology and classification. European Journal of Clinical Nutrition, 61, 5-18. doi: 10.1038/sj.ejcn.1602936

Da Rosa-Zavareze, E., & Guerra-Dias, A. (2011). Impact of heat-moisture treatment and annealing in starches: A Review. Carbohydrate Polymers, 83, 317-328. doi: 10.1016/j.carbpol.2010.08.064

Evans, A. (2016). Resistant starch and health. Elsevier, Encyclopedia of Food Grains, 2, 230-235. doi: 10.1016/B978-0-12-394437-5.00097-8

Fuentes-Zaragoza, E., Riquelme-Navarrete, M., Sánchez-Zapata, E., & Pérez-Álvarez, J. (2010). Resistant starch as functional ingredient: A review. Food Research International, 43, 931-942. doi: 10.1016/j.foodres.2010.02.004

Hernandez-Uribe, J., Agama-Acevedo, E., Gonzalez-Soto, R., Bello-Pérez, L., & Vargas-Torres, A. (2011). Isolation and characterization of Mexican chayote tuber (Sechium edule Sw.) starch. Starch, 63, 32-41. doi: 10.1002/star.201000078

Jiranuntakul, W., Puttanlek, C., Rungsardthong, V., Puncha-arnon, S., & Uttapap, D. (2011). Microstructural and physicochemical properties of heat-moisture treated waxy and normal starches. Journal of Food Engineering, 104, 246-258.

Liu, H., Guo, X., Li, W., Wang, X., Iv, M., Peng, Q., & Wang, M. (2015). Changes in physicochemical properties and in vitro digestibility of common buckwheat starch by heat-moisture treatment and annealing. Carbohydrate Polymers, 132, 237-244.

Palma-Rodriguez, H., Agama-Acevedo, E., Mendez-Montealvo, G., Gonzalez-Soto, R., Vernon-Carter, E., & Bello-Pérez, L. (2012). Effect of acid treatment on the physicochemical and structural characteristics of starches from different botanical sources. Starch, 64, 115-125. doi: 10.1002/star.201100081

Sajilata, M., Singhal, R., & Kulkarni, P. (2006). Resistant Starch- A Review. Comprehensive Reviews In Food Science and Food Safety, 5, 1-17.

Surendra-Babu, A., Parimalavalli, R., & Gaur-Rudra, S. (2015). Effect of citric acid concentration and hydrolysis time on physicochemical properties of sweet potato starches. Internatinal Journal of Biological Macromolecules, 80, 557-565.

Tieko-Nassu, R., Aparecida, L., Goncalves, G., Pereira da Silva, M., & Beserra, F. (2003).

Zamudio-Flores, P., Ochoa-Reyes, E., Ornelas-Paz, J., Aparicio-Saguilán, A., Vargas-Torres, A., Bello-Pérez, L., Rubio-Ríos, A., & Cárdenas-Félix, R. (2014). Effect of storage time on physicochemical and textural properties of sausages covered with oxidized banana starch film with and without betalains. CyTA Journal of food, 1-8. doi: 10.1080/19476337.2014.998713


[a] Universidad Autónoma del Estado de Hidalgo, Instituto de Ciencias Agropecuarias, Tulancingo de Bravo, Av. Universidad Km. 1, ExHacienda de Aquetzalapa AP. 32. Hidalgo.- josvi10@gmail.com, apolovt@hotmail.com, sotos@uaeh.edu.mx, rbtogzt@hotmail.com

[b] Centro de Investigación en Alimentación y Desarrollo, A.C. Unidad Cuauhtémoc, Avenida Río Conchos s/n, Parque Industrial, Apartado Postal 781, C.P. 31570, Ciudad Cuauhtémoc, Chihuahua, México.- pzamudio@ciad.mx