Efecto de fitohormonas sobre explantes de mamilas juveniles de Echinocatus grusonii Hildm para la inducción de callogénesis in vitro

Palabras clave: explante, reguladores, ácido indol-3-acético, 6-bencilaminopurina, Murashige & Skoog

Resumen

Echinocactus grusonii es una cactácea endémica de México, sin embargo, se encuentra en riesgo debido a la colecta y comercialización por su valor ornamental. Se estableció un protocolo para la inducción de callogénesis in vitro a partir de mamilas de ejemplares juveniles de Echinocactus grusonii Hildm. Se evaluó el agente desinfectante NaClO a diferentes concentraciones y combinaciones con Tween 80, así como, se evaluaron diferentes concentraciones de reguladores de crecimiento (AIA y BAP) en medio MS al 50%. Se registró el porcentaje de contaminación, número total de callos por explante, porcentaje de callos, número promedio de raíces por explante. Los tratamientos de desinfección no presentaron diferencias significativas, el tratamiento de 1 mg/L BAP + 4 mg/L AIA permite obtener mayor número y porcentaje de callos (3.2 y 64%, respectivamente). Estos resultados son importantes para la propagación de cactáceas ornamentales a fin de reducir el consumo ilegal de estas.

Descargas

La descarga de datos todavía no está disponible.

Citas

Adama., (2023) Captan 50 WP. Ficha técnica de productos fitosanitarios. http://www.adama.com/mexico

Adema, M., (2015). ¿Por dónde empezamos?. En: Sharry, S., Adema, M. & Abedini W (Eds.). Plantas de probeta, Manual para la propagación de plantas por cultivo de tejidos in vitro. Edulp, Bolivia, pp. 81-91.

Aguirre, A., (2016). Distribución espacial de especies de cactáceas en la región del desierto chihuahuense. Tesis de maestría. Facultad de Zootecnia y Ecología. Universidad Autónoma de Chihuahua. Chihuahua, México.

Bogado, F., Vera, B. C., Ayala, P., Sansberro, P., Luna, C., (2016). Uso de distintos desinfectantes auperficiales para el establecimiento in vitro de segmentos nodales de Grevillea robusta. Ciencias Agronómicas 16, 011-016.

Borges, G. M., Estrada, A. E., Pérez, R. I., Meneses, R. S., (2009). Uso de distintos tratamientos de desinfección en el cultivo in vitro de Dioscorea alata L. clon caraqueño. Revista Colombiana de Biotecnología 11(2), 127-135.

Bouamama, B., Salem, A., Zoghlami, N., Zemni, H., Mliki, A., Ghorbel, A., (2011). Somatic embryogenesis and plantlet regeneration from immature anthers of Opuntia ficus-indica. Journal of Horticultural Science & Biotechnology 86(4), 313-318. DOI: 10.1080/14620316.2011.11512766

Campos, J., Arteaga, M., Campos, S., Chico, J., Cerna, L., (2020). Establecimiento de un protocol de desinfección y micropropagación in vitro de “caoba” Swietenia macrophylla King (Meliaceae). Arnaldoa 27(1), 86-94. DOI: 10.22497/arnaldoa.271.27107

Ceroni, S. A. H, Castro, C. V., (2013). Manual de cactus, identificación y origen. Dirección General de Diversidad Biológica. Ministerio del Ambiente, Perú, 29 p.

Correia, D., Bernardo, J. C., (2020). Propagação in vitro de Echinocactus grusonii. Boletim de Pesquisa e Desenvolvimento 206. Embrapa Agroindustria Tropical. pp 22.

De Oliveira, S. A., Da Silva Machado, M. F. P., Priolo, A. J., Mangolin, C. A., (1995). In vitro propagation of Cereus peruvianus Mill. (Cactaceae). In vitro Cellular & Developmental Biology-Plant, 31: 47-50.

Diario Oficial de la Federación, (2010). Norma Oficial Mexicana NOM-059-SEMARNAT-2010, Protección ambiental-Especies nativas de México de flora y fauna silvestre-Categorias de riesgo y especificaciones para su inclusión, exclusión o cambio-Lista de especies en riesgo. pp 77.

Echeverria, P. L. C., Cifuentes, O. G. C., Granados, R. J. M., Arias, P. J, Fernández, L. C., (2007). Cinética de desinfección para cinco desinfectantes utilizados en industria farmacéutica. Revista Cubana de Farmacia 41(2). 0-0.

Ferreira, F., Fernandes, F., Barbeta, P., Facó, O. & Paiva, F. (2006). Somatic embryogenesis and plant regeneration in Opuntia ficus-indica (L.) Mill. (Cactaceae). Scientia Horticulture 108. 15-21. DOI: 10.1016/j.scienta.2005.12.007

Fuentes, M. A., (2017). Propagación in vitro de cactáceas mexicanas amenazadas. Tesis de maestría. Instituto Politécnico Nacional, Michoacán, México, 83 p.

García-González, D. A., Santos-Díaz, M. S., Flores-Margez, J. P, Osuna-Ávila, P., (2021a). Influencia del Ca2+, pH, agar y reguladores de crecimiento en la propagación in vitro de Echinocactus parryi (Engelm). Terra Latinoamericana 38(3), 489-498. DOI: 10.28940/terra.v38i3.734

García-González, D. A., Santos-Díaz, M. S., Flores-Margez, J. P, Osuna-Ávila, P., (2021b). Effects of the growth regulators for the induction of somatic embryos from different explants of Echinocactus parryi Engelm., an endemic and endangered species. Revista Chapingo Serie Ciencias Forestales 27(3): 431-447. DOI: 10.5154/r.rchscfa.2020.08.053

Guzmán, U., Arias, S., Dávila, P., (2003). Catálogo de cactáceas mexicanas. Primera ed. México: Universidad Nacional Autónoma de México. pp. 247.

Lema-Ruminska, J., Goncerzewicz, K., Gabriel, M., (2013). Influence of abscisic acid and sucrose on Somatic Embryogenesis in cactus Copiopa tenussima Ritt. Forma mostruosa. The Scientific World Journal 2013, 1-7. DOI: 10.1155/2013/513985

Mandujano, M., Golubov, J. & Reyes, J. (2002). Lo que usted siempre quiso saber sobre las cactáceas y nunca se atrevió a preguntar. Biodiversitas 6(40), 4-7.

Melgarejo, G. J., (2011). Mecanismo de acción de los fungicidas. Revista Ventana al Campo Andino 15, 193-202.

Mendoza, G. (2007). Propagación in vitro de Astrophytum ornatum (De Candolle) Weber (Cactaceae), especie amenazada de extinción. Tesis de grado. Área Académica de Biología. Universidad del Estado de Hidalgo. Pachuca, México.

Mendoza, D. S., González, S., Ruíz, R., Robles, R., Hernández-Baumgarten, E., Soto, N., Ciprián, C. A., Mendoza, E. S., (2004). Estudio por microscopia electrónica del efecto de plata coloidal sobre Escherichia coli y Streptococcus suis. Memoria Congreso Nacional AMVEC.

Miguel-Talonia, C., Téllez-Valdés, O., Murguía-Romero, M., (2014). Las cactáceas del Valle de Tehuacán-Cuicatlán, México: estimación de la calidad del muestreo. Revista Mexicana de Biodiversidad 85, 436-444. DOI: DOI: 10.7550/rmb.31390

Morones, R. R., (2009). El uso de la plata en los antibióticos del futuro. Revista Digital Universitaria 10(10). http://www.revista.unam.mx/vol.10/num10/art69/int69.htm

Pérez-Rosés, R., Risco, E., Vila, R., Peñalver, P., Cañigueral, S., (2014). Antioxidant activity of Tween-20 and Tween-80 evaluated throughdifferent in-vitro tests. Journal of Pharmacy and Pharmacology 67, 666-672. DOI: 10.1111/jphp.12369

Pariani, S. (2015). Condiciones ambientales de cultivo y asepsia. En: Sharry, S., Adema, M. & Abedini W (Eds.). Plantas de probeta, Manual para la propagación de plantas por cultivo de tejidos in vitro. Edulp, Bolivia, pp. 73-80.

Ramos-Meléndez, A., Ramos-Perfecto, D., (2015). Efectividad de diferentes agentes antimicrobianos en la desinfección de conos de gutapercha. Odontología Sanmarquina 18(1), 19-22.

Rodríguez, M., (2006). Propagación in vitro de Echinocactus grusonii Hild., (Cactaceae), especie en peligro de extinción. Tesis de grado. Área Académica de Biología. Universidad Autónoma del Estado de Hidalgo. Pachuca, México.

Rodríguez, B. M., Latsague, V. M, I., Chacón, F. M. A., Astorga, B. P. K., (2014). Inducción in vitro de callogénesis y organogénesis indirecta a partir de explantes de cotiledón, hipocótilo y hoja en Ugni molinae. Bosque (Valdivia) 35(1), 111-118. DOI: 10.4067/S0717-92002014000100011

Suárez-Padron, I. (2020). Cultivo de tejidos vegetales. Fondo Editorial Universidad de Córdoba, Colombia.

Ticona, J., Triguero, M. L., (2019). Evaluación de tres métodos de desinfección para el establecimiento in vitro de papaya (Carica papaya L.) En la estación experimental Sapecho. Revista de Investigación e Innovación Agropecuaria y de Recursos Naturales 6(1), 24-29

Vidican, I. T., Lazár, A. N., Iancu, C. V., Carbunar, M., (2020). Comparative study on regenerative and organogenic capacity of Echinocactus mihanovichii and Echinopsis (Zucc.) chamaecereus f. lutea cultivation in vitro in the presence in the cultural medium of 3-indutyl butyric acid (aib) added in different concentrations. Analele Universitatii din Oradea, Fascicula: Protectia Mediului 34: 143-152. DOI: 10.5281/zenodo.4362296

Villanueva, R. M., Navarro, M. C., Eliosa, H. R., (2016). Germinación de tres especies de cactáceas endémicas de México en condiciones asépticas 16(1), 1-16. DOI: 10.21704/za.v16i1.633

Villareal, B. (2015). ¿Cómo se forman las nuevas plantas in vitro? En: Sharry, S., Adema, M. & Abedini W (Eds.). Plantas de probeta, Manual para la propagación de plantas por cultivo de tejidos in vitro. Edulp, Bolivia, pp. 92-101.

Publicado
2024-01-05
Cómo citar
Dávila-Sandoval, J. E., & Galván-Hernández, D. M. (2024). Efecto de fitohormonas sobre explantes de mamilas juveniles de Echinocatus grusonii Hildm para la inducción de callogénesis in vitro. Pädi Boletín Científico De Ciencias Básicas E Ingenierías Del ICBI, 11(22), 81-87. https://doi.org/10.29057/icbi.v11i22.10985

Artículos más leídos del mismo autor/a