Ensayos germinativos en especies maderables con potencial para su micropropagación

Germinación de especies maderables

Palabras clave: cultivo, desinfección, pinos, viabilidad, pruebas

Resumen

La deforestación es un factor antropogénico que altera los bosques. Para mitigar este fenómeno se han planteado diversas estrategias, siendo una de estas la propagación in vitro. En este trabajo se seleccionaron especies con potencial para el cultivo in vitro, mediante la aplicación de pruebas a lotes de semillas de diversas especies. La viabilidad se calculó mediante una prueba con tetrazolio y la germinación mediante siembra en algodón por 21 días. Para el cultivo in vitro se empleó medio WP. Se probaron dos protocolos de desinfección empleando NaClO, así como, cinco tratamientos pre-germinativos. Las semillas de Pinus michoacana, y Retama sphaerocarpa resultaron viables (61% y 100%). P. pseudostrobus y P. michoacana mostraron 43.3% y 40% de germinación. Existió contaminación total aplicando el Protocolo 1, el Protocolo 2 la redujo un 20-40%. De los tratamientos pre-germinativos, únicamente la estratificación mostró efectividad. Se concluye que P. michoacana es una especie con potencial para el cultivo in vitro.

Descargas

La descarga de datos todavía no está disponible.

Citas

Arredondo, J. J. & Espinosa, U. (2021). Pruebas de germinación y viabilidad de tres coníferas a través del tiempo de almacén en el Banco de Germoplasma de la Comisión Forestal del Estado de Michoacán. E-CUCBA, (17), 124–130.

Basil, G.; Leanza, M. & Honorato, M. (2001). Ensayo de germinación de semillas de pino con diferentes estratificaciones en frío. Patagonia Forestal. CIEFAP, Vol. 7(4):13-15.

Borchert, R. (1967), The Cultivation of Tissues of Cupressus lusitanica in vitro. Physiologia Plantarum, 20: 608-616.

Bridg, H. (2000). Micropropagation and determination of the in vitro stability of Annona cherimolla and Annona muricata. Humboldt. University of Berlin. 1-100.

Chalupa, V. (1990). Micropropagation of Hornbeam (Carpinus betulus L.) and Ash (Fraxinus excelsior L.). Biologia Plantarum. 32(5):332-338.

Coutiño-Rodríguez, E. M. (2015). Plata Coloidal: Xenobiótico, Antígeno y Disruptor Hormonal. REB. Revista de educación bioquímica, 34(1), 10-25.

David, A., Laine, E. & David, E. (1995). Somatic embryogenesis in woody plants. Journal of Soil and Water Conservation 41(5): 317-320.

de Feria, M., Chávez, M., Barbón, R., La O, M., Pérez, M., Jiménez-Terry, F., Quiala, E. & Agramonte, D. (2008). Establecimiento in vitro de brotes apicales de Pinus caribaea var. caribaea. Biotecnología Vegetal, 8(1): 15-20.

Galicia, L., Chávez-Vergara, B. M., Kolb, M., Jasso-Flores, R. I., Rodríguez-Bustos, L. A., Solís, L. E., Guerra de la Cruz, V., Pérez-Campuzano, E. & Villanueva, A. (2018). Perspectivas del enfoque socioecológico en la conservación, el aprovechamiento y pago de servicios ambientales de los bosques templados de México. Madera y bosques, 24(2), https://doi.org/10.21829/myb.2018.2421443

George, E. F. (1993). Plant propagation by tissue culture: The technology. Great Britain: exegetics Limited. Part 1. The Technology. 2 ed. Edington, UK: Exegetics Ltd. 1(2):574.

Gupta, P. K., Timmis, R. T., Timmis, K., Grob, J., Karlson, W. & Welty, E. (1999). Advance in coniphers technique improvement through somatic embryogenesis. En: Kazno, R. & Komamine, A. (eds.). Capítulo 29. Proceedings of the 12th Toyota Conference Challenge of Plant and agriculture Science to the crisis of biosphere on the earth in the 21th Century. pp: 33-39.

Hartmann, H. & Kester, D. (1977). Propagación de plantas. Principios y Prácticas. Continental. México. 810 p.

Hernández, H. M. (2018). Aislamiento y rescate de embriones de Pinus patula. Universidad Autónoma Metropolitana. Unidad Xochimilco.

Hong, T. D., S. Linington & R. H. Ellis. 1996. Seed Storage Behaviour: a Compendium. Handbook for Genebanks. Roma, (4).

Jenq, Y., Jeng, C., Zenn C., Yang, J. C., Chung, J. D. & Cheng, Z. Z. (1994). Vegetative propagation of adult Eucalyptus grandis x E. urophylla and comparison of growth between micropropagated plantlets and root cuttings. Plant Cell Report 15: 170-173.

Khan, T. A., Yusuf, M., & Fariduddin, Q. (2018). Peróxido de hidrógeno en la regulación del metabolismo vegetal: Señalización y su efecto bajo estrés abiótico. Photosynthetica. 56: 1-12.

Klimaszewska, K., Trontin, J. F., Becwar, M. R., Devillard, C., Park, Y. S. & Lelu, M. A. (2007). Recent progress in somatic embryogenesis of four Pinus spp. Tree and Forestry Science and Biotechnology 1: 11-25.

Lainé, E., David, H. & David, A. (1988). Callus formation from cotyledon protoplasts of Pinus oocarpa and Pinus patula. Plant Physiology. 72: 374-378.

Lesney, M.S. (1989). Growth responses and lignin production in cell suspensions of Pinus elliottii elicited by chitosan or mycelium of Cronartium quercuum f. sp. fusiforme. Plant Cell, Tissue and Organ Culture 19: 23-31.

Lloyd, G. & McCown, B. (1981). Commercially feasible micropropagation of mountain laurel, Kalmia latifolia, by the use of shoot tip culture. Proceedings of the International Plant Propagators Society 30:421-427.

Perea, M. & Navarro, W. (1988). Técnicas in vitro para la producción y mejoramiento de plantas. Universidad Nacional, CONICIT. Bogotá, Colombia.

Purchit, S., Kukda, G., Sharma, P., & Tak, K. (1994). In vitro propagation of an adult tree Wrightia tomentosa through enhanced axillary branching. Plant Science. 103: 67-72.

Ribas, L. F., Zanette, F., Kulchetscki, L., & Guerra, M. P. (2003). Establecimiento de culturas asépticas de Aspidosperma polyneuron. Ciencia Florestal. 13(1): 115-122.

Romero-Sánchez, M. E. (2016). Escenarios de Cambio Climático en el sector forestal. Revista mexicana de ciencias forestales, 7(37), 4-6.

Saborio, F., Dvorak, W. S., Donahue, J. K. & Thorpe, T. A. (1996). In vitro regeneration of plantlets from mature embryos of Pinus ayacahuite. Tree Phisiology, (17): 787-796.

Varela, S. A. & Arana, V. (2010). Latencia y germinación de semillas. Tratamientos pregerminativos. “Sistemas Forestales Integrados” Área Forestal - INTA EEA Bariloche, (3) 1-10.

Vargas, O. (2008). Estrategias para la restauración ecológica del bosque altoandino: El caso de la Reserva Forestal Municipal de Cogua, Cundinamarca. Universidad Nacional de Colombia.

Vázquez-Collazo I. (1996). Microorganismos asociados a la semilla de tres especies de pino y técnicas de desinfección. Revista Ciencia Forestal en México, 21 (79).

Vázquez-López, M. S., Vázquez-Badillo, M. E., Antonio-Bautista, A. & Mancera-Rico. A. (2021). Hongos en semillas de Pinus montezumae Lamb. y Pinus greggii Engelm. Ex Parl. almacenadas bajo dos humedades relativas. Revista Mexicana De Ciencias Forestales 12 (66), https://doi.org/10.29298/rmcf.v12i66.689

Publicado
2024-01-19
Cómo citar
Yáñez-Islas, I. A., & Galván-Hernández, D. M. (2024). Ensayos germinativos en especies maderables con potencial para su micropropagación. Pädi Boletín Científico De Ciencias Básicas E Ingenierías Del ICBI, 12(23). Recuperado a partir de https://repository.uaeh.edu.mx/revistas/index.php/icbi/article/view/12079
Tipo de manuscrito
Artículos de investigación

Artículos más leídos del mismo autor/a