Resistencia Sistémica Adquirida en Phaseolus coccineus contra Pseudomona syringae
DOI:
https://doi.org/10.29057/icap.v12i24.16146Palabras clave:
polifenol oxidasa, peroxidasa, extracto libre de células, FabaceaeResumen
El frijol se posiciona como el tercer cultivo más importante en México, debido a ello, se requiere controlar los patógenos que afectan la producción de este alimento; Pseudomona syringae es una bacteria perjudicial para Phaseolus coccineus, por lo tanto, el objetivo de este trabajo fue determinar el tiempo al cual se puede inducir Resistencia Sistémica Adquirida (RSA) en la planta. En el extracto libre de células se registró actividad de las enzimas polifenol oxidasa (PPO) y peroxidasa (POX) a partir del segundo día de exposición, prolongándose hasta el día 7; únicamente la actividad de POX en el extracto libre de células fue mayor en comparación con los tratamientos de bacteria (+) y control (-). Es necesario evaluar otros factores como temperatura, exposición de patógenos y edad de las plantas para optimizar la RSA en la especie P. coccineus.
Descargas
Citas
[1] Cross E. (2018). Efecto de la activación de priming en el desarrollo de nódulos en frijol y su relación en la resistencia contra Pseudomonas syringae pv. Phaseolicola. Centro de Investigación y de Estudios Avanzados del Instituto Politécnico Nacional. Irapuato, Guanajuato. 130 pp.
[2] Torres F., Rojas A. (2018). Suelo agrícola en México: retrospective y prospective para la seguridad alimentaria. Realidad, datos y espacio. Revista Internacional de Estadística y Geografía, 9(3): 138-155.
[3] SADER (Secretaría de Agricultura y Desarrollo Rural). (2022). La importancia de la producción del frijol en México. Recuperado de: https://www.gob.mx/agricultura/articulos/la-importancia-de-la-produccion-de-frijol-en-mexico?idiom=es#:~:text=En%202021%2C%20su%20cosecha%20en,producci%C3%B3n%20y%20Durango%20con%2010%25
[4] Gonzalez A., Fernández A. (2010). La grasa de la judía, una enfermedad emergente en Asturias. Tecnología Agroalimentaria, 7: 12-13.
[5] Delgado-Oramas B., González I., Rodríguez M., Pino O. (2020). La resistencia inducida por productos derivados de plantas: alternativa para el manejo de plagas agrícolas. Revista de Protección Vegetal, 35(3): 1-12.
[6] Goel N., Anukrati K., Paul P. (2017). Biocontrol of bacterial speck of tomato by aqueous extract of Tagetes erecta. Journal of Plant Protection Research, 57(4): 361-369. https://doi.org/10.1515/jppr-2017-0050
[7] Oyoque G., Mena H., Olalde V., Angoa M. (2011). Uso de extractos de Pseudomonas sp (PB11) para el control de la mancha bacteriana en tomate (Solanum lycopersicum). Información Tecnológica, 22(5): 3-10.
http://dx.doi.org/10.4067/S0718-07642011000500002
[8] García A. (2002). Evaluación agro-económica de cinco activadores de las plantas en la Resistencia Sistémica Adquirida (SAR) en el cultivo del tomate (Lycopersicon esculentum, Mill). Zamorano: Escuela Agrícola Panamericana. 54 pp.
[9] Camarena G., Torre R. (2007). Resistencia sistémica adquirida en plantas: estado actual. Revista Chapingo Serie Ciencias Forestales y del Ambiente, 13(2): 157-162.
[10] Cavalcanti F., Resende M., Carvalho C., Silveira J., Oliveira J. (2006). Induced defence responses and protective effects on tomato against Xanthomonas vesicatoria by an aqueous extract from Solanum lycocarpum infected with Crinipellis perniciosa. Biological Control, 39(3): 408-417 https://doi.org/10.1016/j.biocontrol.2006.05.009
[11] Urbanek H., Kuźniak-Gębarowska E., Herka H. (1991). Elicitation of defence responses in bean leaves by Botrytis cinerea polygalacturonase. Acta Physiologiae Plantarum, 13(1): 43–50.
[12] Lanna-Filho R., Souza R., Magalhães M., Villela L., Zanotto E., Ribeiro-Júnior P., Resende M. (2013). Induced defense responses in tomato against bacterial spot by proteins synthesized by endophytic bacteria. Tropical Plant Pathology, 38(4):295-302. https://doi.org/10.1590/S1982-56762013005000011
[13] Morante J., Agnieszka A., Nieto J.E., Carranza M.S., Pico-Saltos R., Bru-Martínez R. (2014). Distribución, localización e inhibidores de las polifenol oxidasas en frutos y vegetales usados como alimento. Ciencia y Tecnología, 7(1): 23-31. https://doi.org/10.18779/cyt.v7i1.135
[14] Goel N., Sahi N., Paul P. K. (2013). Age as a factor in induction of systemic acquired resistance in tomato against bacterial speck by aqueous fruit extracts of Azadirachta indica. Archives of Phytopathology and Plant Protection, 46(14): 1696-1706. https://doi.org/10.1080/03235408.2013.774529
[15] Castro-Baquero L., Castro J., Narváez C. (2006). Catalasa, peroxidasa y polifenoloxidasa de pitaya amarilla (Acanthocereus pitajaya): maduración y senescencia. Acta Biológica Colombiana, 10(2): 49-59.
[16] Zhang H., Dong J., Zhao X., Zhang Y., Ren J., Xing L., Jiang C., Wang X., Wang J., Zhao S., Yu H. (2019). Research progress in membrane lipid metabolism and molecular mechanism in peanut cold tolerance. Frontiers in Plant Science, 10:1-13. https://doi.org/10.3389/fpls.2019.00838
[17] Hu X., Xie F., Liang W., Liang Y., Zhang Z., Zhao J., Hu G., Qin Y. (2022). HuNAC20 and HuNAC25, two novel NAC genes from pitaya, confer cold tolerance in transgenic Arabidopsis. International Journal of Molecular Sciences, 23(4): 1-19.
https://doi.org/10.3390/ijms23042189
[18] López-Granados G., Fernández-Pavía S. P., Cárdenas-Navarro R., Sánchez-Yáñez J. M. (2005). Antagonismo microbiano contra bacterias activadoras de núcleos de hielo: Pantoea agglomerans y Pseudomonas syringae. Revista Chapingo Serie Horticultura, 11(1): 105-111.
Descargas
Publicado
Cómo citar
Número
Sección
Licencia
Derechos de autor 2026 García-Vera Melani Brigitte, Dulce María Galván Hernández

Esta obra está bajo una licencia internacional Creative Commons Atribución-NoComercial-SinDerivadas 4.0.








