Propóleo y derivados bioactivos: evidencia antiviral e inmunomodulación veterinaria

Marcos J. Huerta Medina; Carlos G. García Tovar; Tonatiuh A. Cruz Sánchez; Samantha Jardon Xicotencatl

doi:10.29057/icap.v13iEspecial.16902

Autores/as

Marcos J. Huerta Medina Facultad de Estudios Superiores Cuautitlán https://orcid.org/0009-0006-7224-7354
Carlos G. García Tovar Facultad de Estudios Superiores Cuautitlán https://orcid.org/0000-0003-1890-8730
Tonatiuh A. Cruz Sánchez Facultad de Estudios Superiores Cuautitlán https://orcid.org/0009-0004-8994-5752
Samantha Jardon Xicotencatl Facultad de Estudios Superiores Cuautitlan https://orcid.org/0000-0001-5259-8866

DOI:

https://doi.org/10.29057/icap.v13iEspecial.16902

Palabras clave:

propóleo, derivados bioactivos, actividad antiviral, inmunomodulación, virología veterinaria

Resumen

Las infecciones virales representan un desafío en medicina veterinaria por su alta diseminación, diversidad biológica y escasez de terapias antivirales específicas. El propóleo, una matriz apícola compleja rica en compuestos fenólicos y terpenoides, ha despertado interés como agente antiviral natural. Esta revisión sintetiza críticamente la evidencia disponible sobre propóleo y sus derivados frente a virus de importancia veterinaria, considerando modelos experimentales, preparaciones y mecanismos de acción. Compuestos como el éster fenetílico del ácido cafeico (CAPE) y el ácido ferúlico muestran efectos antivirales mediante acción viricida directa, interferencia con la adsorción y entrada viral, inhibición de la replicación intracelular y modulación de rutas celulares como NF-κB. También se describen efectos inmunomoduladores y adyuvantes, incluyendo estimulación de citocinas y mejora de respuestas humoral y celular. La evidencia procede principalmente de estudios in vitro y experimentales in vivo en virus que afectan a abejas, aves, cerdos, bovinos, equinos y caninos. No obstante, la variabilidad en origen botánico, métodos de extracción y diseño experimental limita la comparabilidad y la aplicabilidad clínica.

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Biografía del autor/a

Marcos J. Huerta Medina, Facultad de Estudios Superiores Cuautitlán

Laboratorio 4 “Morfología Veterinaria y Biología Celular”, Unidad de Investigación Multidisciplinaria, Facultad de Estudios Superiores Cuautitlán, Universidad Nacional Autónoma de México. Carretera Cuautitlán–Teoloyucan km 2.5, Col. San Sebastián Xhala, Cuautitlán Izcalli, Estado de México, C.P. 54714.

Carlos G. García Tovar, Facultad de Estudios Superiores Cuautitlán

Laboratorio 4 “Morfología Veterinaria y Biología Celular”, Unidad de Investigación Multidisciplinaria, Facultad de Estudios Superiores Cuautitlán, Universidad Nacional Autónoma de México. Carretera Cuautitlán–Teoloyucan km 2.5, Col. San Sebastián Xhala, Cuautitlán Izcalli, Estado de México, C.P. 54714.

Tonatiuh A. Cruz Sánchez, Facultad de Estudios Superiores Cuautitlán

Laboratorio 6 “Laboratorio de Servicio de Análisis de Propóleos (LASAP)”, Unidad de Investigación Multidisciplinaria, Facultad de Estudios Superiores Cuautitlán, Universidad Nacional Autónoma de México. Carretera Cuautitlán–Teoloyucan km 2.5, Col. San Sebastián Xhala, Cuautitlán Izcalli, Estado de México, C.P. 54714.

Samantha Jardon Xicotencatl, Facultad de Estudios Superiores Cuautitlan

Médico Veterinario Zootecnista, doctora en ciencias y profesora-investigadora de la Facultad de Estudios Superiores Cuautitlán, Universidad Nacional Autónoma de México. Desarrolla investigación y docencia en morfología veterinaria y biología celular, con énfasis en citoesqueleto, citomorfología y aplicaciones en Medicina Veterinaria.

Citas

[1] Abu A. Potential benefits of propolis in large and small animal practices: a narrative review of literature. World Vet J. 2023;13(3):441–451. https://cyberleninka.ru/article/n/potential-benefits-of-propolis-in-large-and-small-animal-practices-a-narrative-review-of-the-literature

[2] Alkhalefa N, Khaliel S, Tahoon A, Shaban H, Lokman M, Magouz A, et al. In vitro investigation of the antiviral activity of propolis and chitosan nanoparticles against genotype VII Newcastle disease virus. Front Vet Sci. 2022. https://doi.org/10.3389/fvets.2022.947641

[3] Bogdanov S. Propolis: composition, health and medicine – a review. Bee Product Science. 2017. https://www.semanticscholar.org/reader/de87447c69509ba0652980539a7593ae167789aa

[4] Búrquez MJG, Juárez ML, Ramírez H, Soto CI, Carrillo L, Cruz TA. Protective effect of a Mexican propolis on MDBK cells exposed to Aujeszky’s disease virus (pseudorabies virus). Afr J Tradit Complement Altern Med. 2015;12(4):106–111. https://doi.org/10.4314/ajtcam.v12i4.16

[5] Cui Z, Zhang J, Wang J, Liu J, Sun P, Li J, et al. Caffeic acid phenethyl ester: an effective antiviral agent against porcine reproductive and respiratory syndrome virus. Antiviral Res. 2024. https://doi.org/10.1016/j.antiviral.2024.105868

[6] Cushnie TPT, Lamb AJ. Antimicrobial activity of flavonoids. Int J Antimicrob Agents. 2005;26:343–356. https://doi.org/10.1016/j.ijantimicag.2005.09.002

[7] Domínguez OV, Rodríguez B, Cruz TA, García CG, Nieto JL, Soto CI. Evaluación de la actividad antiviral del propóleo de abejas nativas (Plebeia frontalis) contra el virus del moquillo canino. Open J Vet Med. 2020;10(12):207–218. https://doi.org/10.4236/ojvm.2020.1012018

[8] Elbasuni SS, Bahgat H, Nada MO, Khattab MS, Abugomaa A, Hamam H, et al. Efficacy of Olea europaea leaves and propolis extracts in the control of experimentally induced infectious bronchitis in broiler chickens. Ger J Vet Res. 2023;3(2):1–10. https://doi.org/10.51585/gjvr.2023.2.0052

[9] Emtíthal M, Seyam H, El-Deeb A, El-Mohandes S, Badr MS, Surano A, et al. The antiviral activities of Egyptian ethanolic propolis extract and honey bee venom against honey bees infected with multiple viruses in vitro. J Apic Res. 2025;64(3):848–861. https://doi.org/10.1080/00218839.2024.2321424

[10] Erdemli HK, Akyol S, Armutcu F, Akyol O. Antiviral properties of caffeic acid phenethyl ester and its potential application. J Intercult Ethnopharmacol. 2015;4(4):344–347. https://doi.org/10.5455/jice.20151012013034

[11] Ferreira LN, Finger PF, Castro CC, Siedler BS, Munhoz LS, Vargas GD, et al. Effect of the ethanolic extract from green propolis on production of antibodies after immunization against canine parvovirus and canine coronavirus. Braz J Vet Res Anim Sci. 2012;49(2):116–121. https://doi.org/10.11606/issn.2318-3659.v49i2p116-121

[12] Gamil SG, Zeedan MM, Allam A, Aballhamed A. Evaluation the efficacy of Egyptian propolis against parapox viruses by production of IFN-γ, TNF-α and immunoglobulin in experimental rat. World Appl Sci J. 2014;31(2):199–207. https://doi.org/10.5829/idosi.wasj.2014.31.02.82118

[13] Hazem A, Pitică-Aldea IM, Popescu C, Matei L, Dragu D, Economescu M, et al. The antiviral/virucidal effects of alcoholic and aqueous extracts with propolis. Farmacia. 2017;65(6):868–876. https://farmaciajournal.com/wp-content/uploads/2017-06-art-08-Hazem_Popescu_Lupuliasa_868-876.pdf

[14] Kasote D, Bankova V, Viljoen AM. Propolis: chemical diversity and challenges in quality control. Phytochem Rev. 2022;21:1887–1911. https://doi.org/10.1007/s11101-022-09816-1

[15] Lazăr CI, Duca G, Sandru C, Olah D, Pall E, Cerbu C, et al. Honey and propolis reduce the antibacterial resistance of staphylococci. Med Weter. 2024;80(11):584–589. http://www.medycynawet.edu.pl/images/stories/pdf/pdf2024/112024/2024116939.pdf

[16] Ma X, Guo Z, Zhang Z, Li X, Wang X, Liu Y, Wang X. Ferulic acid isolated from propolis inhibits porcine parvovirus replication potentially through Bid-mediated apoptosis. Int Immunopharmacol. 2020. https://doi.org/10.1016/j.intimp.2020.106379

[17] Ma X, Guo Z, Li X, Yang K, Li X, Liu Y, Zhao L, Zhang Z. Phytochemical constituents of propolis flavonoid, immunological enhancement, and anti-porcine parvovirus activities isolated from propolis. Front Vet Sci. 2022. https://doi.org/10.3389/fvets.2022.857183

[18] Mendonça R, Nascimento R, Fernandes A, Silva P. Antiviral action of aqueous extracts of propolis from Scaptotrigona aff. postica against Zika, Chikungunya, and Mayaro virus. Sci Rep. 2024;14:15289. https://doi.org/10.1038/s41598-024-65636-7

[19] Mendonça R, Nascimento RM, Fernandes AC, Almeida MI, da Silva J. Antiviral action of different molecules obtained from invertebrates against avian coronavirus. Butantan Institute; 2021. https://papers.ssrn.com/sol3/papers.cfm?abstract_id=5237051

[20] Murcia B. Revisión bibliográfica sobre la capacidad antimicrobiana del extracto de propóleo. Universidad Europea; 2023. https://hdl.handle.net/20.500.12880/6084

[21] Olgierd B, Żyła K, Banyiś A, Morawiec E. The pluripotent activities of caffeic acid phenethyl ester. Molecules. 2021;26(5):1335. https://doi.org/10.3390/molecules26051335

[22] Ożarowski M, Karpiński TM. The effects of propolis on viral respiratory diseases. Molecules. 2023;28:359. https://doi.org/10.3390/molecules28010359

[23] Peter CM, Picoli T, Zani JL, Latosinski GS, Lima M, Vargas GD, et al. Antiviral and virucidal activity of hydroalcoholic extracts of propolis against bovine herpesvirus type 1 and bovine viral diarrhea virus. Pesq Vet Bras. 2017;37(7):667–675. https://doi.org/10.1590/S0100-736X2017000700003

[24] Reveles S, Carreón R, Sánchez J, Rivero J, Medina C. Evaluación del efecto antiviral in vitro del extracto etanólico del propóleo hacia el rubulavirus y parvovirus porcino. Engormix; 2015.

https://www.engormix.com/porcicultura/virus-cerdos/evaluacion-efecto-antiviral-vitro_a32583/

[25] Shimizu T, Hino A, Tsutsumi A, Park YK, Watanabe W, Kurokawa M. Anti-influenza virus activity of propolis in vitro and its efficacy against influenza infection in mice. Antiviral Chem Chemother. 2008;19(1):7–13. https://journals.sagepub.com/doi/epdf/10.1177/095632020801900102

[26] Shpychak OS, Chauhan P. Study of the antiviral activity of propolis phenolic fraction. Acta Sci Pharm Sci. 2020;4(9):1–10. https://dspace.nuph.edu.ua/handle/123456789/27210

[27] Simoni I, Aguiar B, Martineli A, Martins R, Bittencourt M, Frankland A, et al. In vitro antiviral activity of propolis and Baccharis sp. extracts on animal herpesviruses. Arq Inst Biol. 2018. http://dx.doi.org/10.1590/1808-1657000972016

[28] Silva NP, Domínguez L, Boone SA, Gerba CP, Cira-Chávez LA, Ijaz MK, McKinney J. Brazilian and Mexican propolis and their possible mechanism of action against non-enveloped viruses. PLoS One. 2025;20(5):e0323129. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0323129

[29] Tsuchiya Y, Abd-Ellatieff HA, Abou-Rawash AA, Yanai T. Evaluation of preventive effects of Brazilian green propolis on equine herpesvirus 9-induced acute encephalitis. J Vet Sci Med Diagn. 2018;7(2):252. https://doi.org/10.4172/2325-9590.1000252

[30] Vilhelmova NM, Dimitrova Z, Nikolova I, Yordanova N, Mihaylova M, Stephanova M, et al. Antiviral potential of specially selected Bulgarian propolis extracts: in vitro activity against structurally different viruses. Life (Basel). 2023. https://doi.org/10.3390/life13071611

[31] Yosri N, Abd El-Wahed AA, Ghonaim R, Khattab OM, Sabry A, Ibrahim MAA, et al. Anti-viral and immunomodulatory properties of propolis: chemical diversity, pharmacological properties, preclinical and clinical applications, and in silico potential against SARS-CoV-2. Foods. 2021;10:1776. https://doi.org/10.3390/foods10081776

[32] Zeedan GSG, Allam AMM, Nasr SM, Aballhamed AM. Evaluation the efficacy of Egyptian propolis against parapox viruses by production of IFN-γ, TNF-α and immunoglobulin in experimental rat. World Appl Sci J. 2014;31(2):199–207. https://doi.org/10.5829/idosi.wasj.2014.31.02.82118

[33] Zulhendri F, Chandrasekaran K, Kowacz M, Ravalia M, Kripal K, Fearnley J, Perera C. Antiviral, antibacterial, antifungal, and antiparasitic properties of propolis: a review. Foods. 2021;10:1360. https://doi.org/10.3390/foods10061360